Efecto de los errores en la inseminación con semen congelado sobre la morfofisiología espermática bovina

The effect of errors regarding frozen semen insemination on bovine sperm morphophysiology

Contenido principal del artículo

Norberto Villa-Duque
Julián A. Valencia-Giraldo
Germán Gómez-Londoño
Francisco J. Henao-Uribe

Resumen

En el presente trabajo se evaluó la criopreservación a -196°C, la descongelación y la aplicación del semen, en 32 ganaderías bovinas del centro de Colombia, y se estudió, in vitro, el efecto de los errores encontrados sobre la integridad de las membranas y la morfología espermáticas. La recolección de información en fincas se realizó mediante formulario específico. El estudio in vitro se ejecutó en el Instituto de Biotecnología Agropecuaria de la Universidad de Caldas (Manizales, Colombia), y consistió en someter pajillas comerciales de 0.5 ml (30x106 epzs), de toros Holstein, Jersey y Pardo Suizo, a la técnica instrumental convencional y a cinco modificaciones de la misma (errores más frecuentes), mediante un arreglo factorial 6x3 en diseño completamente al azar. En ninguna de las fincas evaluadas se aplicó correctamente la práctica de la inseminación artificial (IA). Los errores más frecuentes fueron: deterioro de la estructura externa y condiciones inadecuadas de almacenamiento de los tanques, almacenamiento de pajillas en la canastilla, y manipulación de pajillas por fuera del cuello del tanque, descongelación en la axila, en agua refrigerada y en agua no potable. La integridad acrosómica (IAs) y la integridad estructural de la membrana espermática (IEM) fueron afectadas (P<0.05) por la interacción genotipo x técnica instrumental. La resistencia de las membranas espermáticas fue afectada (P<0.01) por el genotipo y la técnica instrumental. Los valores más bajos para integridad y resistencia de membranas correspondieron al semen de Pardo Suizo descongelado en la axila y almacenado con bajo nivel de nitrógeno. A pesar de que los porcentajes de gotas citoplásmicas y colas en látigo (<7% y <11.3%, respectivamente) fueron superiores a lo esperado, el porcentaje de espermatozoides normales estuvo siempre por encima del 70%, indicativo de que ninguno de los factores evaluados afectó de manera determinante la morfología espermática.

Palabras clave: análisis de semen; espermatozoide bovino; inseminación artificial; preservación de semen; semen analysis; bovine spermatozoa

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Biografía del autor/a (VER)

Norberto Villa-Duque, MVZ, MSC, Universidad de la Paz, Colombia;

MVZ, MSC, Universidad de la Paz, Colombia;

Julián A. Valencia-Giraldo, MVZ, MSc

MVZ, MSc.
Instituto de Biotecnología Agropecuaria Universidad de Caldas, Colombia. 

Germán Gómez-Londoño, Instituto de Biotecnología Agropecuaria Universidad de Caldas, Colombia.

MVZ, MSc, PhD.

Instituto de Biotecnología Agropecuaria Universidad de Caldas, Colombia. 

Francisco J. Henao-Uribe, Instituto de Biotecnología Agropecuaria Universidad de Caldas, Colombia. Email: fhenao@ucaldas.edu.co

MVZ, MSc, PhD 

Instituto de Biotecnología Agropecuaria Universidad de Caldas, Colombia. Email: fhenao@ucaldas.edu.co

Referencias (VER)

Al-Makhzoomi A, Lundeheim N, Haard M, Rodriguez-Martinez H. Sperm morphology and fertility of progeny-tested AI dairy bulls in Sweden. Theriogenology. 2008;70(4):682-691.

Almquist JO, Grube KE, Rosenberger JL. Effect of thawing time on fertility of bovine spermatozoa in French straws. J Dairy Sci.1982;65(5):824-827.

Anzar M, Kroetsch T, Boswall L. Cryopreservation of bull semen shipped overnight and its effect on post-thaw sperm motility, plasma membrane integrity, mitochondrial membrane potential and normal acrosomes. Anim Reprod Sci.2011;126(1-2):23-31.

Ávila-Portillo LM, Madero JI, López C, León MF, Acosta L, et al. Fundamentos de criopreservación. Rev Colomb Obstet Ginecol. 2006;57 (4):291-300.

Barth AD, Waldner CL. Factors affecting breeding soundness classification of beef bulls examined at the Western College of Veterinary Medicine. The Canadian veterinary journal La revue veterinaire canadienne.2002;43(4):274-284.

Berndtson WE, Pickett BW. 1978. Thecniques for the cryopreservation and fiel handling of bovine spermatozoa. NAO Sciences editor.

Brackett BG, Oliphant G. Capacitation of rabbit spermatozoa in vitro. Biol Reprod.1975;12(2):260-274.

Brown JL, Senger PL, Hillers JK. Influence of thawing time and postthaw temperature on acrosomal maintenance and motility of bovine spermatozoa frozen in .5-ml French straws. J Anim Sci. 1982;54(5):938-944.

Campbell RC, Hancock JL, Rothschild L. Counting live and dead bull spermatozoa. J Exp Biol. 1953;30:44-49.

Carreira JT, Mingoti GZ, Rodrigues LH, Silva C, Perri SH, Koivisto MB. Impact of proximal cytoplasmic droplets on quality traits and in-vitro embryo production efficiency of cryopreserved bull spermatozoa. Acta Vet Scand.2012;54:1.

Castillo R, Morales AM, Carrasco A. Guia de uso de la criocirugia en atencion primaria. Medicina de Familia (And). 2002;3(2);114122.

Correa JR, Rodriguez MC, Patterson DJ, Zavos PM. Thawing and processing of cryopreserved bovine spermatozoa at various temperatures and their effects on sperm viability, osmotic shock and sperm membrane functional integrity. Theriogenology. 1996;46(3):413-420.

Diaz O, Mesa H, Gómez G, Henao FJ. Evaluación invitro de la viabilidad del semen porcino hasta 120 horas de almacenamiento en refrigeración. Veterinaria y Zootecnia. 2009;3:32-37.

Foote RH. The history of artificial insemination: Selected notes and notables. J Anim Sci. 2002;80:1-10.

Hallap T, Haard M, Jaakma U, Larsson B, Rodriguez-Martinez H. Does cleansing of frozen-thawed bull semen before assessment provide samples that relate better to potential fertility? Theriogenolog. 2004;62(3-4):702-713.

Kasimanickam R, Nebel RL, Peeler ID, Silvia WL, Wolf KT, et al. Breed differences in competitive indices of Holstein and Jersey bulls and their association with sperm DNA fragmentation index and plasma membrane integrity. Theriogenology. 2006;66(5):1307-1315.

Mazur P. Freezing of living cells: mechanisms and implications. Am J Physiol. 1984;247(3 Pt 1):C125-142.

Mendoza JA, Dulin P, Warren T. The lower hydrolysis of ATP by the stress protein GroEL is a major factor responsible for the diminished chaperonin activity at low temperature. Cryobiolog.2000;41(4):319-323.

Nebel RL. 1997. Thechniques for Artificial Insemination of cattle whith frozen-thawed semen. RS Youngquist editor. En: Current therapy in large animal theriogenology p. 251-256.

Nur Z, Kamuran II, Ak K. Effects of different temperature treatments applied to deep stored bull semen on post-thaw cold shocked spermatozoa. Bull Vet Inst Pulawy. 2006;50:79-83.

O’Flaherty C, Beorlegui N, Beconi MT. Participation of superoxide anion in the capacitation of cryopreserved bovine sperm. Int J Androl.2003;26(2):109-114.

Osorio-Serna RE, Giraldo JF, Mesa H, Gómez G, Henao FJ. Evaluación de la integridad acrosómica en semen de verraco. Veterinaria y Zootecnia. 2007;1:41-47.

Pace MM, Sullivan JJ, Elliott FI, Graham EF, Coulter GH. Effects of thawing temperature, number of spermatozoa and spermatozoal quality on fertility of bovine spermatozoa packaged in 5 ml french straws. J Anim Sci.1981;53:693-701.

Perez-Llano B, Yenes-Garcia P, Garcia-Casado P. Four subpopulations of boar spermatozoa defined according to their response to the short hypoosmotic swelling test and acrosome status during incubation at 37 degrees C. Theriogenology.2003;60(8):1401-1407.

Pickett BW, Berndtson WE, Sullivan JJ. Influence of seminal additives and packaging systems on fertility of frozen bovine spermatozoa. J Anim Sci.1978;47(Suppl 2):12-47.

Pursel VG, Johnson LA. Glutaraldehyde fixation of boar spermatozoa for acrosome evaluation. Theriogenology. 1974; 1(2):63-68.

Risopatron J, Sanchez R, Sepulveda N, Villagran E, Peña P. 1994. Seleccion de espermatozoides de bovino desde semen congelado-descongelado.Comparacion de dos metodos. Archivos de Medicina Veterinaria (Valdivia). 1994;26(1):25-40.

Rodriguez OL, Berndtson WE, Ennen BD, Pickett BW. Effect of rates of freezing, thawing and level of glycerol on the survival of bovine spermatozoa in straws. J Anim Sci. 1975;41(1):129-136.

Rubio-Guillen J, González D, González Y, Madrid-Bury N, QuinteroMoreno A. Puede el ORT complementar las pruebas clasicas de valoracion seminal y predecir la fertilidad en toros. Revista Luz. 2007;1-5.

Saacke R. Fertilidad del toro: una opinion sobre su estado actual y perspectivas. Taurus, BsAs.2003;5:18-28.

Spitzer J. 2000. Bull Breeding Soundness Evaluation: Current Status. IN Chenoweth P.J. International Veterinary Information Service editor. En: Topics in Bull Fertility. Manhattan, Kansas, USA.


Troxel TR. 2007. Purebred cattle series: artificial insemination. University of Arkansas Division of Agriculture, Cooperative Extension Service, FSA3118.

Veznik Z, Svecova D, Zajicova A, Reckova Z, J. R. The interrelationship between quality parameters of sperm before and after separation by gradient centrifugation. Veterinarni Medicina.2007;52(10):423–429.

Watson PF. The causes of reduced fertility with cryopreserved semen. Animal reproduction science. 2000;60-61:481-492.

Woods EJ, Benson JD, Agca Y, Critser JK. Fundamental cryobiology of reproductive cells and tissues. Cryobiology.2004;48(2):146-156.